Milieux de culture

Filtre NPS Schaufus Pottinger pour la recherche des Levures et moisissures.

Filtre NPS / NKS Ø 47 mm pour l'analyse simplifiée de l’eau et des boissons. 

Milieux de culture stériles, déshydratés sur carton, vendus avec membranes filtrantes stériles emballées individuellement.

• plus rapide grâce à l’utilisation de boîtes de Pétri prêtes à l’emploi
• économique
• vendus en pack de 100, emballés individuellement

GELOSE LETHEEN BD 268010-500G

La gélose Letheen est utilisée pour inactiver les composés d'ammonium quaternaire et d'autres conservateurs lors de la détermination de la teneur en eau et le nombre de bactéries présentes dans les cosmétiques et autres produits.

L'addition de la Lécithine et le Polysorbate 80 du milieu Letheen permettent de neutralisee efficacement les composés d'ammonium quaternaire dans les désinfectants.

Les apports du milieu Letheen:
- Les peptones et de l'extrait de bœuf fournissent les sources de carbone et d'azote nécessaires à la croissance.
- La lécithine et le polysorbate 80 sont ajoutés comme désinfectants tensioactifs et agents de neutralisation.
- Le chlorure de sodium est utilisé pour l'équilibre osmotique.

Composition du milieu :
- Extrait de boeuf : 3, g
- Caséine de digestion pancréatique : 5,0 g
- Dextrose : 1,0 g
- Agar : 15,0 g
- Polysorbate 80 : 7 ,0 g
- Lécithine : 1,0 g

Le bouillon Listeria d'enrichissement UVM 1 est utilisé pour la recherche de Listeria monocytogenes dans la viande et les produits carnés. Il est recommandé de pré-enrichir en bouillon UVM 1, puis d’enrichir en bouillon UVM 2 les échantillons.

Préparation du bouillon de pré-enrichissement UVM 1 :
- dissoudre 54,4 g/l d'eau distillée
- autoclaver 121 °C/15 min

Préparation du bouillon de pré-enrichissement UVM 2 :
- à 1 litre de bouillon de pré-enrichissement UVM 1 amené à 45 °C ajouter une ampoule de supplément sélectif UVM 2 Merck 4039

Composition du bouillon Listeria :
Tryptose : 10,0
Extrait de levure : 5,0
Extrait de viande : 5,0
Esculine : 1,0
Chlorure de sodium : 20,0
Di-sodium hydrogénophosphate : 12,0
K di-hydrogénophosphate : 1,35
Acide nalidixique : 0,02
Acriflavine HCI : 0,012
pH final 7,2 ± 0,2 à 25 °C

La bile de bovins et d'ovins Sigma B8381 a une application dans la recherche bactériologique pour étudier l'adaptation aux sels biliaires de bactéries telles que Lactobacillus.

Le bouillon de base GIOLITTI-CANTONI est utilisé avec un supplément de 3,5% de Tellurite de Potassium dans l'enrichissement de Staphylococcus aureus provenant des aliments pendant les procédures d'isolement, tel que recommandé par l'ISO 6888-3: 2003.

Gélose Hektoen pour l’isolement des Entérobactéries et en particulier des Salmonelles.

Préparation:

Dissoudre 75 g/l. Chauffer légèrement et laisser bouillir quelques secondes, ne pas autoclaver.

Incubation en stries sur boîte 24 et 48 h à 37 °C.

Composition :
Protéose peptone : 12,0
Extrait de levure : 3,0
Chlorure de sodium : 5,0
Thiosulfate de sodium : 5,0
Sels biliaires : 9,0
Citrate de fer ammoniacal : 1,5
Salicine : 2,0
Lactose : 12,0
Saccharose : 12,0
Fuchsine acide : 0,1
Fuchsine acide : 0,04
Bleu de bromothymol : 0,065
Agar agar : 13,0-13,5
pH final 7,5 ± 0,2 à 25 °C

Filtre NPS Glucose Tryptone pour la recherche des Bactéries thermophiles sporulantes et mésophiles.

Filtre NPS  Ø 47 mm pour l'analyse simplifiée de jus de fruits, sucres, produits du sucres.

Milieux de culture stériles, déshydratés sur carton, vendus avec membranes filtrantes stériles emballées individuellement.

• plus rapide grâce à l’utilisation de boîtes de Pétri prêtes à l’emploi
• économique
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Agar BAT selon la methode IFU no 12 GranuCult®

Pour le dénombrement, la détection et l'identification des bactéries d'altération thermo-acidophiles sporulantes (Alicyclobacillus spp.) À partir de jus et de produits dérivés du jus et de leurs ingrédients, environnement échantillons, y compris l'eau de traitement et d'autres matériaux dans le domaine de la production et de la manipulation des aliments.
Ce milieu de culture est conforme aux spécifications données par la méthode IFU n ° 12.
La gélose BAT est nommée à partir de Bacillus acidoterrestris (BAT), l'ancien nom d'Alicyclobacillus acitoterrestris.

Mode d'action:

L'agar BAT contient du glucose comme source de carbone et d'énergie. L'extrait de levure est une source de vitamines,
en particulier le groupe B. Le dihydrogénophosphate de potassium agit comme un tampon. Le pH bas et la température d'incubation élevée inhibent la flore contaminante. Ce support contient de nombreux oligo-éléments qui répondent aux exigences spécifiques du thermoacidophile sporogène, bactéries d'altération (Alicyclobacillus spp.). L'agar est l'agent de solidification; en raison du pH bas, le gel
la force est faible. Suite à la dernière révision de la méthode IFU n ° 12 de 2019, les composants toxiques chlorure de cobalt (II)
l'hexahydrate et l'acide borique ont été éliminés de la formulation.

Le milieu Chromatic Coli Coliform est un milieu sélectif chromogène utilisé pour la détection et le dénombrement
des β-glucuronidase-positive E. coli et les bactéries coliformes dans les échantillons d'aliments et d'eau.

Les apports du milieu :
- Les peptones : les acides aminés, l'azote, le carbone, les vitamines et les minéraux pour la croissance des organismes.
- L'extrait de levure :  un source de vitamines, en particulier du groupe B.
- Le chlorure de sodium maintient l'équilibre osmotique du milieu.
Le mélange chromogène et sélectif permet d'identifier les microorganismes sur la base de la couleur et de la morphologie des
les colonies tout en inhibant la plupart des organismes Gram-positifs.
- L'agar :  l'agent de solidification.

Composition du milieu pour 1 Litre:
- Peptone : 15.0 g/L
- Extrait de levure : 3.0 g/L
- Chlorure de sodium : 5.0g/L
- Chromogene ou agent de sélection: 1.7 g/L
- Agar : 15.0 g/L
pH 7.2 +/-0.2 à 25°C

Incubation :
-  en aérobiose à 35 ± 2°C pendant 18-24 heures.
Les conditions d'incubation peuvent varier en fonction de la cible de l'analyse :
- 44 ± 1°C pendant 24 ± 2 heures si la recherche porte sur des bactéries coliformes fécales ;
- 30 ± 1°C pendant 24-48 heures pour maximiser la détection des coliformes totaux.